Publié le 28 mai 2026

À la poursuite des pestivirus : décoder leur stratégie d’échappement immunitaire à l’aide de la fluorescence

Grâce au développement d’un pestivirus marqué par une protéine fluorescente verte (green fluorescent protein GFP), nous disposons désormais d’un nouvel instrument pour examiner les interactions entre le virus et son hôte, et comprendre ainsi les raisons pour lesquelles ces virus survivent aussi facilement chez leurs hôtes.

Les pestivirus, comme le virus de la diarrhée virale bovine (BVD) ou celui de la peste porcine classique, causent des problèmes graves dans les exploitations agricoles, ce qui conduit à des entraves au bien-être des animaux et à des pertes économiques. De plus, le virus de la BVD (BVDV) constitue un modèle unique pour étudier l’interaction des virus avec le système immunitaire inné de l’hôte. En effet, il peut provoquer des infections persistantes qui se caractérisent par une immunotolérance complète à la souche virale concernée.

• Pourquoi cette étude est-elle importante ?

  Dans cette étude, nous avons établi la construction des pestivirus pour pouvoir générer de nouvelles variantes et poursuivre l’étude de leur pathogenèse. En recourant à cette méthode, nous avons aussi développé une variante marquée par une protéine fluorescente verte (GFP).

• Description de l’étude

  Le clonage TAR (transformation-associated recombination) nous a permis de construire différents pestivirus chez lesquels nous avons modifié la glycoprotéine d’enveloppe E^rns sans lui retirer son infectiosité.

  E^rns est une protéine virale tout à fait fascinante : elle fait partie de la structure du virus tout en étant une endoribonucléase (RNase), excrétée des cellules sous forme soluble. Cette RNase joue le rôle de sentinelle en éliminant l’ARN viral mal localisé avant que le système immunitaire de l’hôte ne le reconnaisse. En conséquence, les cellules de l’hôte ne réagissent pas par la production d’interféron (IFN), un messager antiviral. C’est ainsi que les pestivirus parviennent à déjouer la réponse immunitaire de l’hôte.

• Quels sont les résultats principaux ?

  Dans notre étude, nous avons utilisé pour le clonage le pestivirus de Bungowannah (BuPV), car il accepte bien les mutations et peut infecter plusieurs types de cellules. Dans ce contexte, nous avons également produit un BuPV chez lequel E^rns est marqué par GFP. Ce virus est resté stable durant plusieurs cycles d’infection et sa fonction RNas était préservée. Ces résultats ont confirmé le fait que le marquage par GFP ne nuisait en rien à la principale activité biologique d’E^rns.

• Et ensuite ?

  On ne sait pas encore exactement où E^rns agit : dans l’espace extracellulaire, dans un compartiment intracellulaire, voire à l’interface entre les cellules infectées et les cellules non infectées ? La dernière hypothèse est particulièrement pertinente dans le cas des cellules dendritiques plasmacytoïdes (pDCs), principales cellules du corps qui produisent de l’IFN. Le mécanisme exact n’est toutefois pas encore élucidé. À l’aide de notre pestivirus marqué par GFP, nous espérons en apprendre davantage sur les mécanismes cellulaires d’E^rns dans le cycle de vie viral.

Titre et lien vers la publication

«GFP-Tagged E^rns in Bungowannah Pestivirus: A Tool for Viral Tracking and Functional Studies» GFP-Tagged E^rns in Bungowannah Pestivirus: A Tool for Viral Tracking and Functional Studies | MDPI

Auteurs

Sara Ezzat und Matthias Schweizer

Informations complémentaires

• IVI Éradication de la diarrhée virale bovine (BVD) en Suisse
• IVI Diagnostic des épizooties – BVD
• OSAV Bovine Virus-Diarrhoe BVD

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